孕早期白带增多、肚子胀通常是正常的孕期反应，怀孕之后，大部分人都会有小腹隐约的疼痛，像痛经一样，伴下腹轻度坠胀、腰酸，但程度不会太重，对日常生活没有明显的影响，这是由于子宫在增长，子宫周围的血供在增加，胎囊撑着子宫引起弱宫缩，只要不是宫外孕，这个不用担心，正常现象，严重的明显的疼痛，需要去看医生。

怀孕以后孕酮升高，孕酮减少宫缩和出血，也有减少肠蠕动、导致腹胀、便秘的作用，如果平时活动量太少，下午或晚上容易肠胀气出现腹痛，适当增加活动或少吃多餐可以缓解。

怀孕之后，偶尔会有突发的阴道疼痛，这也是正常现象，跟肌肉不规则的收缩、盆腔血供增加、子宫晃动、扭转之后的牵扯有关系。

ELISA样本制备指南及注意事项

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定义及介绍

ELISA（enzyme linked immunosorbent assay，酶联免疫吸附测定）是最基础的免疫学实验之一，其理论基础是抗原抗体的特异性反应。ELISA因其特异性强、灵敏度高、稳定性好而被广泛使用。ELISA试剂盒检测样品包括血清、血浆、细胞培养上清、灌洗液或尿液等生物样本，实验操作步骤并不繁琐，但实验完成后需要把样本检测结果OD值转化为浓度值，从而供下一步分析所用，因此样品的预处理对于后续数据处理和结果分析非常重要。

样本制备指南

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血清

全血样品于室温放置2小时或2-8℃过夜后于2-8℃，1000×g离心20min，取上清即可检测。收集血液的试管应为一次性的无内毒素试管。避免使用溶血，高血脂样品

2.血浆

抗凝剂推荐使用EDTA-Na

，样品采集后30min内于2-8℃，1000×g离心15min，取上清即可检测。

3组织匀浆/组织全蛋白

用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织，去除残留血液，称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比，比如1g的组织样品对应9mL的PBS，具体体积可根据实验需要适当调整，并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂)加入玻璃匀浆器中，在冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞，可以对匀浆液进行反复冻融或超声破碎。最后将匀浆液于2-8℃，5000×g离心5-10min，取上清检测。

其余方法：在分析天平（AL204型）上，称量50-100mg组织样本。在样本中加入5倍质量体积的含1%PMSF的1×PBS缓冲液；并用小剪刀等工具将组织样本剪碎（尽可能小块）。注：1×PBS缓冲液使用前，需加入PMSF，现用现加，PMSF终浓度为1mM。打开超声破碎仪，将超声破碎仪的功率调至25%，超声时间2s，间隔时间5s，总时间2min。放入样本，冰上超声3min。视样本匀浆情况调整总时长。超声完成后，将样本放于4℃或冰上裂解30min。打开离心机，将转速调至12000×g；将样本放入离心机，离心10min，取上清，按需要分装，于-20℃贮存。注：留取20μL样本，用于后续BCA法测定样本蛋白含量。

组织匀浆液或组织全蛋白中的蛋白浓度对于检测实验的影响至关重要，建议样本蛋白浓度至少1mg/mL以上，较低浓度蛋白的组织匀浆液有可能导致ELISA检测失败。

4.细胞提取液

贴壁细胞

用冷的PBS轻轻清洗，然后用胰蛋白酶消化，1000×g离心5min后收集细胞；

可直接离心收集。收集的细胞用冷的PBS洗涤3次。每10

个细胞中加入150-200μLPBS重悬(推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂；若含量很低可减少PBS的体积)并通过反复冻融或超声使细胞破碎。将提取液于2-8℃，1500×g离心10min，取上清检测。注：留取20μL样本，用于后续BCA测定。

其余方法：

对于

：去除培养液，用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍。以2百万细胞为例，在样本中加入100μL的含1%PMSF的1×PBS缓冲液，震荡混匀细胞，4℃或冰上裂解30min。用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触。必要时可以进行超声处理，超声步骤与组织样本相同。

对于

：离心收集细胞，以2×10

细胞为例，在样本中加入100μL的含1%PMSF的1×PBS缓冲液，震荡混匀细胞，4℃或冰上裂解30min。用手指轻弹悬浮细胞以充分裂解。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果细胞量较多，必需分装成（5-10）×10

细胞/管，然后再裂解。必要时可以进行超声处理，超声步骤与组织样本相同。注：1×PBS缓冲液使用前，需加入PMSF，现用现加，PMSF终浓度为1mM。打开离心机，将转速调至12000×g；将样本放入离心机，离心10min，取上清，按需要分装，于-20℃贮存。注：留取20μL样本，用于后续BCA法测定样本蛋白含量。

5.细胞培养上清或其他生物体液

收集液体后于2-8℃，1000×g离心20min，除去杂质及细胞碎片。取上清检测。注：因细胞培养基中的胎牛血清影响或其他生物体液中杂蛋白的影响，不建议进行BCA法测定样本蛋白含量。

实验细节与注意事项

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收集血液应避免产生溶血现象。红细胞破碎，释放大量的过氧化物酶，会影响ELISA检测中的辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP）的酶促反应，造成检测结果的不确定性。

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样品收集后若在1周内进行检测可保存于2-8℃，若不能及时检测，请按一次使用量分装，冻存于-20℃(1个月内检测)，或-80℃(3个月内检测)，避免反复冻融。在检测前，冷冻过的样本应缓慢地融化并离心除去冻融过程产生的沉淀物。室温混匀后使用。

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试剂盒检测范围不等同于样本中待测物的浓度范围，建议实验前通过相关文献预估样本中待测物的浓度并通过预实验确定样本的实际浓度情况。如果样品中待测物浓度过高或过低，请对样本做适当的稀释或浓缩。

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检测样本的稀释推荐多步稀释法，常规稀释检测为血清/血浆检测稀释度为2倍、20倍、200倍；细胞上清稀释度为5倍、50倍、500倍；建议实验前通过相关文献预估样本中待测物的浓度。

对于稀释倍数比较大的检测样本，参考稀释方案如下：

稀释100倍：一步稀释。取5μL样本到495μL标准品/样本稀释液内，做100倍稀释；

稀释1000倍：两步稀释。取5μL样本到95μL标准品/样本稀释液内，做20倍稀释，再取5μL 20倍稀释样本到245μL标准品/样本稀释液内，做50倍稀释，总共稀释1000倍；

稀释100000倍：三步稀释。取5μL样本到195μL标准品/样本稀释液内，做40倍稀释，再取5μL 40倍稀释样本到245μL标准品/样本稀释液内，做50倍稀释，最后取5μL 2000倍稀释样本到245μL标准品/样本稀释液内，做50倍稀释，总共稀释100000倍；

每步稀释时取液量不少于3μL，稀释倍数不超过100倍。每步稀释都需混合均匀，避免起泡。

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若所检样本不在说明书所列样本之中，建议做预实验验证其检测有效性。

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若使用化学裂解液制备组织匀浆或细胞提取液，由于引入某些化学物质会导致ELISA测值出现偏差。

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某些重组蛋白可能与试剂盒中捕获或检测抗体不匹配而出现不能检测的情况。

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对于组织匀浆、组织全蛋白、细胞提取液等蛋白提取样本，经BCA法测定样本蛋白含量后，建议进行蛋白浓度的统一化，避免因组织重量、细胞数、产物体积等因素造成的人为误差；例如，统一全部检测样本浓度为1-2mg/mL，进行后续的稀释和检测。

这要看你是什么时候发生的孕酮偏高。如果是月经期间孕酮偏高，提示黄体囊肿，这样将会影响正常排卵；如果是怀孕期间孕酮偏高，则没有影响。

Hcg正常而孕酮偏高有哪些原因？

■1、月经期间孕酮偏高的情况：

月经期间Hcg正常而孕酮偏高，往往表示女性神经内分泌功能失调引起雌孕激素分泌异常。月经期间孕酮偏高，会导致子宫颈口闭合，白带异常稠厚，精子难以通过使得受孕难度增高。

另外月经期间孕酮偏高了，通过下丘脑的负反馈作用，从而抑制促性腺激素的正常分泌，这样就导致卵泡迟迟不能发生成熟和排卵反应，这样不排卵或滤泡期大大延长，月经周期也变得非常不规律。

所以月经期间如孕酮偏高，将会影响正常排卵。并且还与黄体囊肿或者其它的内分泌性肿瘤有关系。建议及时配合医生的检查，查找出孕酮偏高的具体原因以对症治疗。

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■2、怀孕之后孕酮分泌忽高忽低：

怀孕早期的孕酮由卵巢分泌，也就是黄体酮。孕酮的分泌本身是脉冲式的，一天当中总是忽高忽低，远没有Hcg稳定。所以现在很多医生不再将孕酮作为诊断胚胎好坏的依据。

胚胎发育不好，孕酮就偏低，这是因果关系。很多人往往搞错了，认为孕酮低了就会导致胚胎发育不好，这是完全搞反了的。所以孕早期乱补孕酮从而导致孕酮异常偏高，这个也是可能性之一。

■3、提示胎盘已经分泌孕酮：

受精8～10周前后胎盘形成，此时Hcg将会逐渐下降，而孕酮则呈稳定上升趋势。所以如果孕早期出现Hcg正常而孕酮偏高，那么就提示胎盘可能已经分泌孕酮了，这是好事情，值得高兴才对！

总之：

月经期间孕酮偏高是病理性表现，应听从医生的建议；而怀孕早期主要看Hcg的翻倍情况，孕酮只能作为参考。孕酮的分泌一天当中总是忽高忽低，所以拿孕酮高低判断胚胎的好坏意义不大。

希望以上我的文章能够帮助到你，如果还有疑问，可以在下方评论区给我留言。祝你平安好孕！